Zespół PZMSiS:

dr hab. Ilona Sadok

Adiunkt badawczy

email: ilona.sadok@kul.pl

tel. +48 (81) 445 46 18

ORCID: 0000-0003-1154-7581

 

dr Agnieszka Krzyszczak-Turczyn

Adiunkt badawczy

e-mail: agnieszka.krzyszczak@kul.pl

tel. +48 (81) 445 46 18

ORCID: 0000-0002-0143-0489

 

mgr inż. Ilona Jonik

Starszy specjalista badawczo – techniczny

email: ilona.jonik@kul.pl

tel. +48 (81) 445 46 18

 

 

Pracownia Zastosowań Metod Separacji i Spektroskopii

specjalizuje się w rozwijaniu, walidacji i zastosowaniach analitycznych metod do jakościowego i ilościowego oznaczania aktywnych biologicznie związków, w tym niskocząsteczkowych (leków, metabolitów, toksyn, pestycydów, produktów syntez biochemicznych) oraz wysokocząsteczkowych substancji (peptydów i białek). Do tego celu wykorzystywane są przede wszystkim różnorodne metody chromatograficzne oraz spektrometria mas.

 

 

 

 

dr hab. n. med i n. o zdr. Ilona Sadok

adiunkt badawczy

 

Wykształcenie:

• absolwentka Wydziału Chemii Uniwersytetu Marii Curie-Skłodowskiej w Lublinie, kierunek Analityka chemiczna, dyscyplina nauki chemiczne
• studia podyplomowe na kierunku diagnostyka molekularna – Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie
• doktorat w dyscyplinie nauki chemiczne – Uniwersytet Marii Curie-Skłodowskiej
  w Lublinie
• stopień doktora habilitowanego w dziedzinie nauk medycznych i nauk o zdrowiu
  w dyscyplinie biologia medyczna – Katolicki Uniwersytet Lubelski Jana Pawła II

Nagrody i wyróżnienia:

• stypendium Ministra dla wybitnych młodych naukowców w dziedzinie nauk medycznych i nauk o zdrowiu/ biologia medyczna (2024 r.)
• stypendium Prezydenta Miasta Lublin w ramach „Miejskiego programu stypendialnego dla studentów i doktorantów” (2017 r.)
• nagroda za najlepszy projekt studencki zaprezentowany podczas XII Lubelskiego Festiwalu Nauki (2015 r.)
• wielokrotna stypendystka nagród Rektora Uniwersytetu Marii Curie-Skłodowskiej
  w Lublinie dla najlepszych studentów i doktorantów
• wyróżnienie Rektora Uniwersytetu Marii Curie-Skłodowskiej w Lublinie za oryginalne i twórcze osiągnięcia naukowe (2024 r.)
• nagrody indywidualne Rektora Katolickiego Uniwersytetu Lubelskiego Jana Pawła II za pracę zawodową znacznie wykraczającą poza zakres obowiązków służbowych (2017 r.) oraz osiągnięcia naukowe (2021 r., 2022 r., 2023 r., 2024 r.)
• honorowy członek Koła Naukowego „Alkahest” działającego przy Wydziale Chemii Uniwersytetu Marii Curie-Skłodowskiej w Lublinie)

Staże i pobyty naukowe:

• Max-Planck-Institute of Biochemistry w Martinsried (Department of Proteomics and Signal Transduction) – Niemcy (stipendium programu PROM)
• Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie  (Katedra Epizootiologii i Klinika Chorób Zakaźnych) – Polska
• Aristotle University of Thessaloniki (School of Agriculture, Pesticide Science Laboratory) –Grecja (ERASMUS+, staff mobility)

Członkostwo w Towarzystwach Naukowych i pełnione funkcje:

• Polskie Towarzystwo Chemiczne
• Polskie Towarzystwo Biologii Medycznej
• Polskie Towarzystwo Farmakologiczne
• Europejski Związek Towarzystw Farmakologicznych EPHAR
• Międzynarodowa Unia Farmakologii Podstawowej i Klinicznej IUPHAR
• kuratorka Koła Naukowego Biotechnologii KUL

Zainteresowania naukowe:

• opracowywanie i walidacja metod analitycznych z wykorzystaniem chromatografii cieczowej, chromatografii gazowej i spektrometrii mas na potrzeby biologii medycznej, chemii analitycznej oraz analizy prób środowiskowych
• kompleksowa analiza składu próbek biologicznych i środowiskowych
  z wykorzystaniem elektrochemii, technik LC-SQ, LC-QQQ, LC-QTOF, GC-MS, GC-QQQ, spektrofotometrii i analizy miareczkowej
• poszukiwanie i identyfikacja markerów molekularnych chorób człowieka na poziomie metabolomu i proteomu (głównie w obszarze nowotworów i chorób metabolicznych)
• badanie kierunków modulowania metabolizmu tryptofanu szlakiem kinureninowym, serotoninowym i indolu w patogenezie chorób człowieka
• identyfikacja egzogennych źródeł metabolitów tryptofanu i badanie ich wpływu na funkcjonowanie organizmu
• metody produkcji żywności fermentowanej wzbogaconej w metabolity tryptofanu
  o działaniu prozdrowotnym
• opracowywanie (bio)czujników woltamperometrycznych na potrzeby monitoringu metabolitów tryptofanu w próbkach biologicznych
• identyfikacja mikroorganizmów w próbkach środowiskowych, klinicznych i żywności techniką MALDI-TOF MS
• opracowywanie nowych rozwiązań metodycznych na potrzeby oceny bezpieczeństwa
  i jakości żywności (głównie w zakresie skażenia mykotoksynami i określenie składu polifenolowego)
• zastosowanie biomateriałów, materiałów polimerowych lub materiałów z przetwórstwa odpadów do izolacji polifenoli z żywności, usuwania związków o działaniu toksycznym i mutagennym (pestcydów, mykotoksyn, PFAS) z żywności i próbek środowiskowych 

Nagrody studenckie w ramach promotorstwa/mentoringu:

• koordynatorka projektu studenckiego “Antybiotykooporność bakterii: globalne wyzwannie - lokalne działanie” finansowanego przez MEiN w ramach programu „Studenckie Koła Naukowe Tworzą Innowacje” (SKN/SP/570395/2023) nagrodzonego UniservitateAward 2024: Service-Learning Experiences in CatholicHigherEducation przez Uniservitate – HUB na Europę Środkowo-Wschodnią i Bliski Wschód  (2024 r.) oraz wyróżnionego w kategorii StRuNA-Science 2024 przez Studencki Ruch Naukowy

 

 

dr Agnieszka Krzyszczak-Turczyn

adiunkt badawczy

 

Wykształcenie:

• absolwentka Wydziału Chemii Uniwersytetu Marii Curie-Skłodowskiej w Lublinie, kierunek Analityka chemiczna, dyscyplina nauki chemiczne
• doktor w dziedzinie nauk ścisłych i przyrodniczych w dyscyplinie nauki chemiczne (rozprawa doktorska obroniona z wyróżnieniem) – Uniwersytet Marii Curie-Skłodowskiej w Lublinie
• studia podyplomowe na kierunku Diagnostyka molekularna – Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie

Nagrody i wyróżnienia:

• Wyróżnienie rozprawy doktorskiej pt. „Badanie pochodnych wielopierścieniowych węglowodorów aromatycznych w biowęglach” (2024 r.)
• Nagroda za III miejsce w Konkursie wydziałowym na najlepszą pracę doktorską obronioną na Wydziale Chemii Uniwersytetu Marii Curie-Skłodowskiej w Lublinie
  w 2024 r.
• Nagroda za III miejsce na najlepszą pracę doktorską w 2024 roku przyznaną przez oddział lubelski Polskiego Towarzystwa Chemicznego.
• Nagroda za I miejsce w Konkursie na Najlepszy Poster na V Zjeździe Naukowym Polskiego Towarzystwa Biologii Medycznej „Biologia-Medycyna-Terapia” 17.09.2022, Lublin.
• Nagroda za I miejsce w Konkursie na Najlepszy Referat na VIII Ogólnopolskiej Konferencji Dyplomantów i Studentów Kierunków Przyrodniczych i Techniczno-przyrodniczych „BIOPOTENCJAŁ 2023”, 23.11.2023 r., Warszawa.
• Indywidualne i zespołowe nagrody Rektora Katolickiego Uniwersytetu Lubelskiego Jana Pawła II za pracę zawodową znacznie wykraczającą poza zakres obowiązków służbowych (2021, 2022, 2023).
• Listy gratulacyjne od Rektora Uniwersytetu Marii Curie-Skłodowskiej w Lublinie
  w uznaniu dorobku naukowego na rzecz Uniwersytetu Marii Curie-Skłodowskiej
  w Lublinie (2022 r., 2024 r.).
• Stypendium Prezydenta Miasta Lublin w ramach „Miejskiego programu stypendialnego dla studentów i doktorantów” (2022/2023)
• Wielokrotna stypendystka nagród Rektora Uniwersytetu Marii Curie-Skłodowskiej
  w Lublinie dla najlepszych studentów i doktorantów
• Nagroda Rektora Uniwersytetu Marii Curie-Skłodowskiej dla Najlepszej Absolwentki na Wydziale Chemii UMCS (2015 r.)

Staże i pobyty naukowe:

• Aristotle University of Thessaloniki (School of Agriculture) – Grecja (ERASMUS+, staff mobility)

Członkostwo w Towarzystwach Naukowych:

• Polskie Towarzystwo Chemiczne
• Polskie Towarzystwo Biologii Medycznej

Zainteresowania naukowe:

• opracowywanie i walidacja metod analitycznych z wykorzystaniem chromatografii cieczowej i spektrometrii mas
• kompleksowa analiza składu próbek z wykorzystaniem technik LC-SQ, LC-QQQ, LC-QTOF oraz spektrofotometrii UV-Vis
• opracowywanie nowych rozwiązań metodycznych na potrzeby oceny bezpieczeństwa i jakości żywności (głównie w zakresie skażenia mykotoksynami)

zastosowanie biomateriałów, materiałów polimerowych do izolacji polifenoli
z żywności, usuwania związków o działaniu toksycznym i mutagennym (pestcydów, mykotoksyn, związków per- i polifluoroalkilowych) z żywności i próbek środowiskowych

 

 

mgr inż. Ilona Jonik

Starszy specjalista badawczo – techniczny

 

Wykształcenie:

• absolwentka Wydziału Chemii Uniwersytetu Marii Curie-Skłodowskiej w Lublinie, kierunek Analityka chemiczna
• absolwentka Wydziału Mechaniki Politechniki Lubelskiej, kierunek Inżynieria biomedyczna
• studia podyplomowe na kierunku Diagnostyka molekularna – Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie

Nagrody:

• nagroda zespołowa Rektora Katolickiego Uniwersytetu Lubelskiego Jana Pawła II za wzorowe wykonywanie obowiązków służbowych (2023 r.)

Członkostwo w Towarzystwach Naukowych:

• Polskie Towarzystwo Biologii Medycznej

 

Zainteresowania naukowe:

• kompleksowa analiza składu próbek z wykorzystaniem technik LC-SQ, LC-QQQ, spektrofotometrii oraz analizy miareczkowej
• metody produkcji żywności fermentowanej wzbogaconej w metabolity tryptofanu
  o działaniu prozdrowotnym

 

WSPÓŁPRACA

Pracownia prowadzi badania przy współpracy z ośrodkami krajowymi i zagranicznymi:

• Uniwersytet Medyczny w Lublinie
• Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie
• Uniwersytet Marii Skłodowskiej-Curie w Lublinie
• Uniwersytet Jagielloński w Krakowie
• Max Planck Institute of Biochemistry, Martinsried, Bayern
• Deakin Univeristy w Geelong, Institute for Frontier Materials, Australia
• InstitutfürChemie, Technische Universität Berlin, Niemcy

 

PROJEKTY REALIZOWANE PRZEZ ZESPÓŁ PZMSiS:

Projekty badawcze:

• „Wzbogacenie kombuchy w cenny metabolit tryptofanu - kwas kinureninowy poprzez dobór substratów fermentacyjnych”. Grant Związku Uczelni Lubelskich INTERPROJEKT, nr INT/004/2024/III-N. Projekt realizowany w latach 2024-2025. Kierownik projektu: dr hab. Ilona Sadok. Projekt realizowany przy współpracy z Uniwersytetem Przyrodniczym w Lublinie i Uniwersytetem Medycznym w Lublinie.
• „Nowe sorbenty na potrzeby dyspersyjnej ekstrakcji do fazy stałej w kontekście oznaczania mykotoksyn w produktach owocowych”. Grant NCN Miniatura 8, nr 2024/08/X/ST4/00739. Projekt realizowany w latach 2024-2025. Kierownik: dr Agnieszka Krzyszczak-Turczyn.
• „Lokalne i ogólnoustrojowe metabolity tryptofanu jako biomarkery raka żołądka”. Grant NCN Preludium 21, nr 2022/45/N/NZ5/01753. Projekt realizowany w latach 2023-2026. Kierownik projektu: mgr inż. Kinga Ożga, wykonawczyni ze strony PZMSiS: dr hab. Ilona Sadok.
• „Badanie wpływu stosowania napojów energetyzujących i wybranych adaptogenów roślinnych na zdrowie i stan psychiczny młodych dorosłych - projekt badawczy”. Grant MEiN (zadanie zlecone), nr MEiN/2023/DPI/3004. Projekt realizowany w latach 2023-2026. Projekt realizowany przy współpracy z Uniwersytetem Medycznym w Lublinie, Uniwersytetem Jagiellońskim (Collegium Medicum) oraz Politechniką Lubelską. Kierownik projektu: prof. dr hab. n. med. Ryszard Maciejewski, wykonawcy ze strony PZMSiS: dr hab. Ilona Sadok, dr Agnieszka Krzyszczak-Turczyn.
• „Antybiotykooporność bakterii: globalne wyzwanie - lokalne działanie”. Grant MEiN w ramch „Studenckie Koła Naukowe Tworzą Innowacje” nr SKN/SP/570395/2023. Projekt realizowany w latach 2023/2024 przy współpracy z Kołem Naukowym Biotechnologii KUL. Koordynatorzy merytoryczni: dr hab. Ilona Sadok, dr hab. Rafał Łopucki.
• „Udział glikacji i szlaku kinureninowego w modulowaniu środowiska nowotworowego”. Grant NCN OPUS13, nr 2017/25/B/NZ4/01198. Projekt realizowany w latach 2018-2021. Kierownik projektu: dr hab. Magdalena Staniszewska, wykonawczyni dr Ilona Sadok.
• „Ocena możliwości zastosowania woltamperometrii w analizie metabolitów tryptofanu (kinurenin)”.Grant NCN Miniatura 2, nr 2018/02/X/ST4/00187. Projekt realizowany w latach 2018–2019; kierownik: dr Ilona Sadok

Projekty dydaktyczne:

• „Badania Instytutu Nauk Biologicznych KUL w obiektywie”. Grant MEiN „Społeczna odpowiedzialność nauki II”, nr. POPUL/SN/0463/2023/01. Projekt realizowany w latach 2023-2025, wykonawczyni ze strony PZMSiS: dr hab. Ilona Sadok.
• „Młody naukowiec – cykl audiowizualny”. Grant MEiN, nr. SONP/SP/550694/2022, wykonawczyni ze strony PZMSiS: dr hab. Ilona Sadok.

 

• „Antybiotykooporność bakterii: globalne wyzwanie - lokalne działanie”. Grant MEiN w ramch „Studenckie Koła Naukowe Tworzą Innowacje” nr SKN/SP/570395/2023. Projekt realizowany w latach 2023/2024 przy współpracy z Kołem Naukowym Biotechnologii KUL. Koordynatorzy merytoryczni: dr hab. Ilona Sadok, dr hab. Rafał Łopucki.
• „Udział glikacji i szlaku kinureninowego w modulowaniu środowiska nowotworowego”. Grant NCN OPUS13, nr 2017/25/B/NZ4/01198. Projekt realizowany w latach 2018-2021. Kierownik projektu: dr hab. Magdalena Staniszewska, wykonawczyni dr Ilona Sadok, mgr inż. Ilona Jonik
• „Ocena możliwości zastosowania woltamperometrii w analizie metabolitów tryptofanu (kinurenin)”.Grant NCN Miniatura 2, nr 2018/02/X/ST4/00187. Projekt realizowany w latach 2018–2019; kierownik: dr Ilona Sadok

 

 

 

URZĄDZENIA, KTÓRYMI DYSPONUJE PZMSiS:

• System chromatografii cieczowej Agilent 1290 Infinity Binary sprzężony z tandemowym analizatorem mas typu Triple Quadrupole (Agilent LC-QQQ6460) wyposażony w źródło jonów typu elektrospray (Agilent Jet Stream) - pozwala na przeprowadzenie analizy ilościowej i jakościowej wielu związków organicznych o średniej lub dużej polarności równocześnie w krótkim czasie w skomplikowanej matrycy próbki. Aparat może pracować m.in.
  w trybie skanowania, obserwowania reakcji fragmentacji, w których powstaje obojętna cząsteczka (NL – ang. neutral loss scan), obserwowania jonów macierzystych, z których powstaje wybrany fragment (PI – ang. precursor Ion scan), monitorowania wybranych jonów oraz śledzenia reakcji fragmentacji (MRM – ang. Multiple reaction monitoring). System dostarcza przede wszystkim informacji o masie i stężeniu związku, a w mniejszym stopniu o budowie cząsteczki. Możliwość fragmentacji jonów macierzystych do jonów potomnych gwarantuje wysoką selektywność i czułość oznaczeń. System znajduje szerokie zastosowanie w metabolomice, kontroli jakości żywności (monitorowanie pozostałości pestycydów, skażenia mykotoksynami), w analizie antybiotyków, w kontroli zanieczyszczeń substancji farmaceutycznych,  produktów leczniczych i wielu innych.

• Analityczny chromatograf cieczowy z detektorem DAD (Agilent 1200) z tandemowym spektrometrem mas typu quadrupol-analizator czasu przelotu (Agilent LC-Q/TOF 6538) - system pozwala na prowadzenie analizy ilościowej szerokiej gamy związków organicznych dających sygnał w zakresie UV po rozdziale chromatograficznym (detekcja z udziałem detektora DAD) lub kompleksowej analizy jakościowej dzięki połączeniu z wysokorozdzielczym detektorem mas - Q/TOF - monitorującym jony powstałe na skutek jonizacji próbki. Detektor Q/TOF dostarcza przede wszystkim informacji o dokładnej masie związku – wzorze sumarycznym, a w mniejszym stopniu o jego zawartości w próbce. Znajduje zastosowanie w metabolomice, proteomice.

• Chromatograf cieczowy (Agilent 1200) z detektorem DAD i analizatorem mas typu pojedynczy quadrupol (Agilent LC-Q 6120) - pozwala na równoczesną analizę ilościową wielu związków organicznych w próbkach o skomplikowanej matrycy po wcześniejszym rozdziale chromatograficznym. Detektor DAD pozwala na detekcję związków dających sygnał w zakresie UV i monitorowanie kilku długości fal równocześnie. System pozwala również na pracę z bardziej selektywnym detektorem - detektorem mas typu pojedynczy kwadrupol wyposażonym w źródło typu elektrospray. Rozwiązanie to pozwala na pracę w trybie skanowania lub obserwacji wybranych jonów charakterystycznych dla substancji oznaczanej. System może znaleźć zastosowanie w analizie żywności, próbek środowiskowych, próbek biologicznych, toksykologicznej, preparatów farmaceutycznych, leków pod kątem zawartości mykotoksyn, pestycydów, witamin, aminokwasów, metabolitów i innych substancji organicznych o działaniu biologicznym.

• Chromatograf gazowy (Agilent Technologies 7890B) sprzężony z tandemowym spektrometrem mas typu potrójny kwadrupol (Agilent Technologies 7000C) wyposażony w przystawkę SPME - system dedykowany do identyfikacji i ilościowego oznaczenia substancji lotnych w próbkach o różnym składzie matrycy. Połączenie
  z tandemowym spektrometrem mas pozwala na monitorowanie jonów fragmentacyjnych powstałych na skutek fragmentacji jonów molekularnych substancji oznaczanych, co gwarantuje wysoką selektywność oznaczeń. Aparat wyposażony jest w przystawkę umożliwiającą pracę z włóknami SPME (z ang. Solid PhaseMicroextraction). SPME jest techniką ekstrakcyjną sprowadzającą się do adsorpcji związków lotnych na włóknie pokrytym materiałem sorpcyjnym. Cechuje się prostotą wykonania, daje możliwość pracy w terenie i nie wymaga stosowania rozpuszczalników do ekstrakcji. System może zostać wykorzystany w analizie toksykologicznej (m.in. substancji antydopingowych, steroidów), w monitorowaniu zanieczyszczeń środowiskowych (m.in. aromatycznych węglowodorów, dibenzofuranów, dioksyn, pestycydów, herbicydów, fenoli, chlorofenoli) w próbkach wód, gleb, powietrza, w analizie związków aromatycznych obecnych w żywności (m.in. kwasów tłuszczowych, estrów, aldehydów, alkoholi, terpenów), w kontroli jakości preparatów farmaceutycznych, w analizie płynów ustrojowych (m.in. narkotyków, alkoholu, barbituranów, leków przeciwdrgawkowych, znieczulających, nasennych, przeciwpadaczkowych).

• Chromatograf gazowy (Agilent Technologies 7890B) sprzężony ze spektrometrem mas typu pojedynczy kwadrupol (Agilent Technologies 5977A) wyposażony w przystawkę Head Space (Agilent Technologies 7697A) - aparat dedykowany do analizy substancji lotnych (przykłady podane powyżej). Chromatograf gazowy pozwala na rozdział substancji na kolumnie, a spektrometr mas na ich identyfikację w oparciu o ich masę. Pozwala na określenie składu ilościowego i jakościowego próbki. System pozwala na pracę z wykorzystaniem techniki Head Space, która pozwala na analizę substancji zapachowych nad powierzchnią próbki (cieczy, ciała stałego). Technika Head Space znajduje zastosowanie w analizie m.in. monomerów w polimerach i plastiku, lotnych składników owoców, warzyw i produktów spożywczych, substancji zapachowych w perfumach, kosmetykach).

• Półpreparatywny chromatograf cieczowy z detektorem UV-VIS z kolektorem frakcji (Agilent 1200) - system pozwala na rozdział mieszanin związków organicznych i zbieraniu frakcji czystych substancji. Stosowany do oczyszczania standardów substancji chemicznych, do wyodrębniania pożądanych substancji z materiału roślinnego, biologicznego, produktów naturalnych, żywności. Może znaleźć zastosowanie w oczyszczaniu/izolacji peptydów, białek, leków, antyoksydantów, flawonoidów, kannabinoidów i wielu innych.

• Spectrometer mas MALDI-TOF/TOF (BruckerUltraXtreme #8259900) - system wykorzystuje energię lasera do jonizacji próbki i utworzenia jonów pochodzących od dużych molekuł z zachowaniem minimalnej fragmentacji. System dedykowany do identyfikacji/analizy biocząsteczek (biopolimerów takich jak DNA, białek, peptydów, cukrów)
  i organicznych molekuł o dużej masie (m.in. polimerów). Może znaleźć zastosowanie do identyfikacji białek wyizolowanych na drodze elektroforezy żelowej, SDS-PAGE.

• Automatyczny system do ekstrakcji cieczowej ASE N350 ThermoScientificDionex - system stosowany do ekstrakcji próbek stałych i cieczy. Wykorzystuje te same rozpuszczalniki co w metodach klasycznych, ale w warunkach podwyższonej temperatury i ciśnienia. Umożliwia to skrócenie czasu i zwiększenie wydajności ekstrakcji substancji oznaczanych z matrycy próbki. Może znaleźć zastosowanie do ekstrakcjianalitów z żywności, produktów farmaceutycznych, aflatoksyn, pestycydów, dioksyn, PCB, WWA, związków cynoorganicznych, dodatków do polimerów w próbkach stałych (np. gleba, osady denne, tkanki).

• Automatyczny system do ekstrakcji w fazie stałej Gilson ASPEC GX271 - system pozwala na izolację/oczyszczanie/zatężanie próbek na kolumienkach SPE (z ang. Solid PhaseExtraction). Szeroko stosowany do przygotowania próbek przed analizą chromatograficzną.

• Koncentrator Genevac EZ-2 Elite Personal Evaporator - aparat próżniowy do odparowania nadmiaru rozpuszczalnika i zatężania próbek ciekłych.

• Termoblok Stuart SBH130D/3 - aparat do delikatnego odparowania rozpuszczalnika z próbek ciekłych w strumieniu azotu. Szczególnie przydatny w sytuacji substancji wrażliwych na podwyższoną temperaturę.

• Automatyczny titratorMettler Toledo Excellence T50M - aparat do rutynowego miareczkowania. Może znaleźć zastosowanie w oznaczaniu chlorków, kwasowości, tanin, zasadowości próbek.

• Miernik pH i przewodnictwa SevenMulti^™ z InLab^® Expert Pro (Mettler Toledo) - pozwala na pomiar pH i przewodności roztworów wodnych.

• Wytrząsarka laboratoryjna typ LPzE-2e (MULTISERW -Morek). Może być stosowana do przesiewania maksymalnie 3 kg materiału sypkiego w analizie na sucho. Jest to przesiewacz laboratoryjny z napędem elektromagnetycznym.

 

W RAMACH WSPÓŁPRACY OFERUJEMY:

• Oznaczanie ilościowe mykotoksynw żywności z wykorzystaniem chromatografii cieczowej i spektrometrii mas.
• Oznaczanie ilościowe metabolitów tryptofanu, w tym wybranych metabolitów szklaku kinureninowego (m.in. kinureniny, 3-hydroksykinureniny, kwas kinureninowy, kwas ksanturenowy, kwas chinolinowy, dwunukleotyd nikotynamido-adeninowy) w materiale biologicznym z wykorzystaniem chromatografii cieczowej i spektrometrii mas.
• Analizę ilościową związków organicznych w próbkach o różnym składzie matrycy z wykorzystaniem chromatografii cieczowej i spektrometrii mas.
• Identyfikacja mikroorganizmów techniką MALDI-TOF MS.